Badanie PCR w kierunku 15 pasożytów jelitowych + pasożyty jelitowe – kompleksowe badanie parazytologiczne kału
840,00 zł
Wykrywanie DNA pasożytów w kale metodą PCR (real-time) oraz pasożyty jelitowe- kompleksowe badanie parazytologiczne kału
Materiał: Kał x4
Czas oczekiwania na badanie: do 10 dni Roboczych
Instrukcja pobrania materiału Panel Parazyt PCR – POBIERZ
Instrukcja pobrania materiału badanie parazytologiczne – POBIERZ
Koszt zestawu pobraniowego został wliczony w cenę.
Najszersza i najdokładniejsza diagnostyka dostępna na rynku
Pakiet łączony łączy dwie uzupełniające się metody – klasyczne badanie przesiewowe 3× pasożyty oraz molekularne PCR, zapewniając pełny obraz infekcji pasożytniczych, zarówno częstych, jak i rzadkich.
1. Badanie przesiewowe – klasyczne 3× pasożyty
Najszerszy zakres wykrywanych pasożytów (37 gatunków + 3 testy antygenowe + ocena makroskopowa).
Badanie przesiewowe umożliwia wykrycie wszystkich pasożytów przewodu pokarmowego, również tych rzadziej spotykanych.
Wykorzystuje rozbudowany zestaw technik laboratoryjnych:
· mikroskopia preparatów bezpośrednich,
· flotacja i sedymentacja,
· specjalistyczne barwienia,
· testy antygenowe (Giardia, Entamoeba histolytica, Cryptosporidium),
· ocena makroskopowa.
Dzięki temu obejmuje największą liczbę możliwych do identyfikacji gatunków – pierwotniaków, nicieni, tasiemców i przywr.
Ograniczenie metod klasycznych
Skuteczność zależy od momentu pobrania próbki.
Jeśli w kale nie ma jaj, cyst lub larw pasożyta, wynik może być fałszywie ujemny.
Dlatego w klasycznym badaniu pobiera się kilkukrotnie, aby zwiększyć szansę wykrycia zarażenia.
Lista pasożytów:
Pierwotniaki :
· Giardia intestinalis
· Endolimax nana
· Blastocystis hominis
· Balantidium coli
· Cryptosporidium spp.
· Entamoeba coli
· Entamoeba histolytica
· Entamoeba dispar
· Entamoeba hartmanni
· Entamoeba polecki
· Dientamoeba fragilis
· Chilomastix mesnili
· Cyclospora cayetanensis
· Iodamoeba butschii
· Cystoisospora belli
· Sarcocystis hominis
Nicienie :
· Ascaris lumbricoides
· Strongyloides stercoralis
· Trichuris trichiura
· Ancylostoma duodenale
· Necator americanus
· Enterobius vermicularis
Tasiemce :
· Taenia saginata
· Taenia solium
· Diphyllobothrium latum
· Rodentolepis nana (Hymenolepis nana)
· Hymenolepis diminuta
· Dipylidium caninum
Przywry :
· Fasciola hepatica
· Dicrocoelium dendriticum
· Opisthorchis felineus
· Fasciolopsis buski
· Clonorchis sinensis
· Paragonimus westermani
· Paragonimus africanus
· Paragonimus mexicanus
· Schistosoma spp.
Testy antygenowe :
· Giardia intestinalis
· Entamoeba histolytica
· Cryptosporidium spp.
2. Badanie PCR – panel 15 pasożytów
Największa precyzja diagnostyczna, identyfikacja DNA pasożytów.
PCR to metoda znacznie czulsza i dokładniejsza od klasycznej mikroskopii, ponieważ wykrywa bezpośrednio materiał genetyczny pasożytów (DNA) – niezależnie od ich formy rozwojowej.
Dzięki temu możliwe jest wykrycie zarażeń nawet wtedy, gdy:
· pasożyt występuje w bardzo małej ilości,
· nie wydala jaj lub cyst,
· klasyczna mikroskopia mogłaby nie uchwycić patogenu.
Ograniczenie PCR
PCR wykrywa konkretną listę gatunków – 15 najczęściej występujących pasożytów jelitowych.
Jeśli zarażenie wywołuje gatunek poza panelem, wynik PCR będzie ujemny mimo zarażenia.
Lista pasożytów:
· Glista ludzka
· Owsik ludzki
· Dientamoeba fragilis
· Blastocystis hominis
· Giardia lamblia
· Entamoeba histolytica
· Cryptosporidium spp.
· Cyclospora cayetanensis
· Tasiemiec (Taenia spp. oraz Hymenolepis spp.)
· Włosogłówka (Trichuris trichiura)
· Tęgoryjec (Ancylostoma spp.).
· Nekator amerykański
· Węgorek (Strongyloides spp.)
· Enterocytozoon spp. / Encephalitozoon spp.
Dlaczego połączenie obu metod daje najlepsze efekty?
✔ Badanie przesiewowe – najszerszy zakres wykrywalnych pasożytów
Obejmuje największą liczbę gatunków, w tym rzadkich.
✔ PCR – najwyższa czułość i precyzja
Idealnie sprawdza się w trudnych, niskointensywnych lub przewlekłych zarażeniach.
Jest też najlepszą metodą kontrolną po leczeniu.
✔ Razem – pełna i komplementarna diagnostyka
Obie metody analizują inne cechy biologiczne pasożytów:
· mikroskopia szuka form rozwojowych,
· PCR wykrywa DNA.
Połączenie ich w jednym profilu daje najwyższą możliwą wykrywalność infekcji pasożytniczych – zarówno częstych, jak i bardzo rzadkich.
Pakiet stworzony z myślą o pacjentach, którzy chcą maksymalnie rozszerzyć diagnostykę.
Zapewnia on:
· najszerszy screening klasyczny,
· najdokładniejszą detekcję molekularną,
· największą pewność diagnostyczną,
· pełną ocenę zarówno zakresu gatunkowego, jak i precyzyjnego oznaczenia DNA pasożytów.
To najbardziej kompleksowy profil badań w kierunku pasożytów jelitowych dostępny obecnie w praktyce laboratoryjnej.
Zgodnie z Rozporządzeniem Ministra Zdrowia z dnia 24 czerwca 2020 r. w sprawie zgłaszania wyników badań w kierunku biologicznych czynników chorobotwórczych u ludzi (Dz.U. 2020 poz. 1118), wykrycie w materiale od pacjenta cyst, trofozoidów, antygenu lub materiału genetycznego Giardia lamblia podlega obowiązkowemu zgłoszeniu do SANEPID-u.
| Zestaw do badania | Mam swój zestaw (zestaw nie będzie wysyłany do pacjenta)., Nie mam swojego zestawu, chcę go otrzymać. |
|---|
Instrukcja pobrania materiału
Przygotowanie się pacjenta do pobrania próbki kału oraz sposób jej pobrania, przechowywania i transportu mają bardzo duży wpływ na wiarygodność wyniku. Dlatego należy zastosować się do poniższych zaleceń:
Wynik badania nie będzie wiarygodny, gdy materiał do badania będzie pobrany podczas przyjmowania: antybiotyków, leków przeciwgrzybicznych, leków przeciwgorączkowych oraz leków odrobaczających. Badanie można wykonać po upływie przynajmniej 2 tygodni od chwili zakończenia leczenia.
Przed oddaniem kału przeznaczonego do badania należy całkowicie opróżnić pęcherz moczowy. Kał nie powinien mieć kontaktu z wodą, moczem czy też ze środkami czystości.
Pobranie materiału – Do badania należy pobrać próbki kału z kilku miejsc.
1. Otworzyć zakupiony w aptece sterylny pojemnik na kał.
2. Przy pomocy plastikowej łopatki należy pobrać próbki z kilku miejsc oddanej porcji stolca. Pojemnik powinien być zapełniony maksymalnie do ¼ wysokości.
3. Jeśli w kale widoczne są pasożyty należy oddzielić je od próbki, wypłukać wodą i dostarczyć do laboratorium w oddzielnym pojemniku zawierającym niewielką ilość wody lub soli fizjologicznej.
4. Pojemnik należy szczelnie zamknąć i opisać imieniem, nazwiskiem oraz numerem PESEL pacjenta.
5. Do momentu dostarczenia próbki do laboratorium, należy przechowywać ją w chłodnym miejscu w temperaturze 2-8° C.


